Епідеміологія та антимікробна резистентність домінуючих серотипів Salmonella в бройлерних інкубаторах Іраку: комплексний аналіз «Єдиного здоров’я»
DOI:
https://doi.org/10.31210/spi2026.29.02.14Ключові слова:
Salmonella Enteritidis, Salmonella Kentucky, Ірак, інкубатор, мультирезистентність, Єдине здоров’я, антимікробна резистентністьАнотація
Птахівничі інкубатори є критичними ланками поширення Salmonella, що безпосередньо впливають на епідемічне благополуччя населення. Попри глобальну загрозу сальмонельозу, на регіональному рівні досі бракує комплексного моніторингу біологічних властивостей цих харчових патогенів у промисловому птахівництві. Це дослідження мало на меті заповнити наявні прогалини в знаннях щодо контамінації Salmonella в бройлерних інкубаторах Іраку. Дослідження тривало з березня по жовтень 2023 року й охоплювало 450 зразків, які рівномірно розподілили за трьома категоріями: вміст сліпої кишки добових курчат (150 зразків), яєчна шкаралупа з вивідних лотків (150 зразків) та мазки з рук персоналу (150 зразків). Мікробіологічний скринінг здійснювали згідно з чинними міжнародними протоколами щодо горизонтальних методів виявлення патогенів. Для ідентифікації сероварів застосовували класичне біохімічне профілювання та реакцію слайд-аглютинації, тоді як чутливість до протимікробних препаратів визначали диско-дифузійним методом за критеріями Інституту клінічних та лабораторних стандартів. За результатами аналізу загальна частота виділення патогену становила 8,4 % (38 позитивних знахідок із 450 протестованих). Зокрема, рівень контамінації вмісту сліпої кишки курчат сягнув 12,0 % (18 зразків), яєчної шкаралупи – 7,3 % (11 зразків), а змивів з рук працівників – 6,0 % (9 зразків). За результатами серотипування встановлено абсолютне домінування двох варіантів: Salmonella Enteritidis – 34,2 % (13 ізолятів) та Salmonella Kentucky – 26,3 % (10 ізолятів). Обидва штами продемонстрували критично високі показники множинної стійкості до ліків (мультирезистентності), які склали 38,5 % (5 ізолятів) та 60,0 % (6 ізолятів) відповідно. Особливе занепокоєння викликає виявлена у штамів Salmonella Kentucky резистентність до ципрофлоксацину на рівні 40,0 % (4 ізоляти) та до цефотаксиму на рівні 20,0 % (2 ізоляти). Постійне виділення обох домінуючих серотипів з усіх типів біологічного матеріалу свідчить про їхню активну циркуляцію в інкубаторах. Таким чином, сучасні бройлерні підприємства є стійкими резервуарами небезпечних мультирезистентних штамів сальмонел. Одночасна присутність класичного пандемічного серовару, пов’язаного з яйцепродуктами, та екологічно витривалого, стійкого до фторхінолонів клону створює серйозну подвійну загрозу для безпеки харчових продуктів. Ця ситуація вимагає негайного впровадження інтегрованої національної стратегії в рамках концепції «Єдине здоров’я», яка передбачає посилення заходів біобезпеки виробничого середовища, суворий контроль за використанням антибіотиків та безперервний систематичний моніторинг на всіх етапах птахівничого континууму.
Посилання
1. Kirk, M. D., Pires, S. M., Black, R. E., Caipo, M., Crump, J. A., Devleesschauwer, B., Döpfer, D., Fazil, A., Fischer- Walker, C. L., Hald, T., Hall, A. J., Keddy, K. H., Lake, R. J., Lanata, C. F., Torgerson, P. R., Havelaar, A. H., & Angulo, F. J. (2015). World Health Organization estimates of the global and regional disease burden of 22 foodborne bacterial, protozoal, and viral diseases, 2010: a data synthesis. PLOS Medicine, 12(12), e1001921. https://doi.org/10.1371/journal.pmed.1001921
2. Havelaar, A. H., Kirk, M. D., Torgerson, P. R., Gibb, H. J., Hald, T., Lake, R. J., Praet, N., Bellinger, D. C., de Silva, N. R., Gargouri, N., Speybroeck, N., Cawthorne, A., Mathers, C., Stein, C., Angulo, F. J., & Devleesschauwer, B. (2015). World Health Organization global estimates and regional comparisons of the burden of foodborne disease in 2010. PLoS Medicine, 12(12), e1001923. https://doi.org/10.1371/journal.pmed.1001923
3. Issenhuth-Jeanjean, S., Roggentin, P., Mikoleit, M., Guibourdenche, M., de Pinna, E., Nair, S., Fields, P. I., & Weill, F.-X. (2014). Supplement 2008–2010 (no. 48) to the White-Kauffmann-Le Minor scheme. Research in Microbiology, 165(7), 526–530. https://doi.org/10.1016/j.resmic.2014.07.004
4. Samad, A., Hamza, M., Muazzam, A., Ahmer, A., Tariq, S., Shahid, M. J., Din, F. U., Akram, W., Kaleem, M. Z., & Ahmad, S. (2022). Overview of bacterial diseases in poultry and policies to control disease and antibiotic resistance. BULLET: Jurnal Multidisiplin Ilmu, 1(1), 1–5.
5. Almashhadany, D. A., Hassan, A. A., & Khan, I. U. H. (2025). Prevalence, serotypes, and antimicrobial resistance of Salmonella species in ready-to-eat foods in Erbil, Iraq. Microorganisms, 13(10), 2225. https://doi.org/10.3390/microorganisms13102225
6. Kanaan, M. H. G. (2023). Prevalence and antimicrobial resistance of Salmonella enterica serovars Enteritidis and Typhimurium isolated from retail chicken meat in Wasit markets, Iraq. Veterinary World, 455–463. https://doi.org/10.14202/vetworld.2023.455-463
7. Shafee, A., & Abdulwahid, M. (2024). Occurrence, antimicrobial resistance, and molecular characterization of Salmonella enterica from chicken products and human in Wasit Governorate of Iraq. Open Veterinary Journal, 14(5), 1117. https://doi.org/10.5455/ovj.2024.v14.i5.5
8. Ali, N., Abdulrahman, N., Aziz, S., & Hassan, S. (2023). Pathological and molecular investigation of paratyphoid Salmonella infection in broiler chicks in Sulaymaniyah province, Kurdistan/Iraq. Basrah Journal of Veterinary Research, 22(3), 42–56. https://doi.org/10.23975/bjvetr.2023.142197.1036
9. Gantois, I., Ducatelle, R., Pasmans, F., Haesebrouck, F., Gast, R., Humphrey, T. J., & Van Immerseel, F. (2009). Mechanisms of egg contamination by Salmonella Enteritidis. FEMS Microbiology Reviews, 33(4), 718–738. https://doi.org/10.1111/j.1574-6976.2008.00161.x
10. Şik, Z., & Akan, M. (2024). Determination of antibiotic resistance in Salmonella Typhimurium and Salmonella Kentucky serotypes of animal origin using conventional and molecular methods. Turkish Journal of Veterinary &Amp; Animal Sciences, 48(1), 72–81. https://doi.org/10.55730/1300-0128.4338
11. International Organization for Standardization. (2017). Microbiology of the food chain – Horizontal method for the detection, enumeration and serotyping of Salmonella – Part 1: Detection of Salmonella spp. (ISO Standard No. 6579-1:2017). https://www.iso.org/obp/ui/#iso:std:iso:6579:-1:ed-1:v1:en
12. Grimont, P. A. D., & Weill, F.-X. (2007). Antigenic formulae of the Salmonella serovars (9th ed.). WHO Collaborating Centre for Reference and Research on Salmonella; Institut Pasteur.
13. Cox, N. A., Bailey, J. S., Mauldin, J. M., & Blankenship, L. C. (1990). Research note: presence and impact of Salmonella contamination in commercial broiler hatcheries. Poultry Science, 69(9), 1606–1609. https://doi.org/10.3382/ps.0691606
14. Abdel-Maksoud, M., Abdel-Khalek, R., El-Gendy, A., Gamal, R. F., Abdelhady, H. M., & House, B. L. (2015). Genetic characterisation of multidrug-resistant Salmonella enterica serotypes isolated from poultry in Cairo, Egypt. African Journal of Laboratory Medicine, 4(1). https://doi.org/10.4102/ajlm.v4i1.158
15. Price, L. B., Graham, J. P., Lackey, L. G., Roess, A., Vailes, R., & Silbergeld, E. (2007). Elevated risk of carrying gentamicin-resistant Escherichia coli among U.S. poultry workers. Environmental Health Perspectives, 115(12), 1738–1742. https://doi.org/10.1289/ehp.10191
16. Whiley, H., & Ross, K. (2015). Salmonella and eggs: from production to plate. International Journal of Environmental Research and Public Health, 12(3), 2543–2556. https://doi.org/10.3390/ijerph120302543
17. Le Hello, S., Bekhit, A., Granier, S. A., Barua, H., Beutlich, J., Zając, M., Münch, S., Sintchenko, V., Bouchrif, B., Fashae, K., Pinsard, J.-L., Sontag, L., Fabre, L., Garnier, M., Guibert, V., Howard, P., Hendriksen, R. S., Christensen, J. P., Biswas, P. K., Cloeckaert, A., Rabsch, W., Wasyl, D., Doublet, B., & Weill, F.-X. (2013). The global establishment of a highly-fluoroquinolone resistant Salmonella enterica serotype Kentucky ST198 strain. Frontiers in Microbiology, 4, 395. https://doi.org/10.3389/fmicb.2013.00395
18. Borges, K., Furian, T., Souza, S., Salle, C., Moraes, H., & Nascimento, V. (2019). Antimicrobial resistance and molecular characterization of salmonella Enterica serotypes isolated from poultry sources in Brazil. Brazilian Journal of Poultry Science, 21(1). https://doi.org/10.1590/1806-9061-2018-0827
19. Ziech, R. E., Lampugnani, C., Perin, A. P., Sereno, M. J., Sfaciotte, R. A. P., Viana, C., Soares, V. M., de Almeida Nogueira Pinto, J. P., & dos Santos Bersot, L. (2016). Multidrug resistance and ESBL-producing Salmonella spp. isolated from broiler processing plants. Brazilian Journal of Microbiology, 47(1), 191–195. https://doi.org/10.1016/j.bjm.2015.11.021
20. Xiong, Z., Wang, S., Huang, Y., Gao, Y., Shen, H., Chen, Z., Bai, J., Zhan, Z., Wen, J., Liao, M., & Zhang, J. (2020). Ciprofloxacin-resistant Salmonella enterica serovar Kentucky ST198 in broiler chicken supply chain and patients, China, 2010–2016. Microorganisms, 8(1), 140. https://doi.org/10.3390/microorganisms8010140
Downloads
Опубліковано
Як цитувати
Номер
Розділ
Ліцензія
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution 4.0 International License.
