Ефективність запропонованого способу підготовки та фарбування мазків фекалій під час лабораторної діагностики гіардіозу собак

Автор(и)

  • Р. А. Противень Національний науковий центр «Інститут експериме-нтальної і клінічної ветери-нарної медицини», м. Харків https://orcid.org/0009-0001-2243-7372

DOI:

https://doi.org/10.31210/spi2026.29.01.31

Ключові слова:

собаки, гіардіоз, лабораторна діагностика, мазки, фарбування, показники ефективності

Анотація

Giardia duodenalis є важливим шлунково-кишковим патогеном у собак, а також людей. Поширеність
гіардіозу варіюється залежно від віку, клінічного стану, утримання та географічного регіону обстежених тварин, а також залежить від використаного лабораторного методу виявлення збудника. Для діагностики протозоозу застосовують мікроскопічні методи для швидкого виявлення цист і трофозоїтів, імунологічні та молекулярні сучасні методи з високою чутливістю та специфічністю. Водночас, удосконалення технології мікроскопії, який може підвищити ефективність діагностування гіардіозу, скоротивши час та витрати є
актуальним напрямом досліджень. Метою досліджень було випробувати запропонований спосіб підготовки та фарбування мазків фекалій для мікроскопічного виявлення збудника гіардіозу у собак. Дослідження
проводили в умовах приватної ветеринарної клініки «ZooЛюкс» (м. Київ) та лабораторії паразитології
Полтавського державного аграрного університету (м. Полтава). Випробовували у порівняльному аспекті спосіб виготовлення вологих мазків із використанням фізіологічного розчину, спосіб із застосуванням
йод-гліцеринового розчину та запропонований спосіб. Встановлено високу діагностичну чутливість
запропонованого способу, що забезпечив 100 % виявлення збудника у зразках, відібраних від собак. За
показником інтенсивності інвазії запропонований спосіб перевищував результативність способу із
застосуванням йод-гліцеринового розчину – на 7,2 % та способу виготовлення вологих мазків із
використанням фізіологічного розчину – у 1,6 раза (Р<0,001). Визначено, що перевагою запропонованого способу підготовки та фарбування мазків фекалій собак під час лабораторної діагностики гіардіозу є
можливість тривалого їх зберігання та транспортування. Це дозволяє отримувати достовірні результати,
навіть, при відтермінованому дослідженні, зберігаючи стабільну морфологію збудника та високу якість
забарвлення мазка. Отримані результати досліджень дозволяють рекомендувати запропонований спосіб
фарбування мазків фекалій собак для підвищення ефективності виявлення гіардій.

Посилання

1. Volotão, A. C., Costa-Macedo, L. M., Haddad, F. S. M., Brandão, A., Peralta, J. M., & Fernandes, O. (2007). Genotyping of Giardia duodenalis from human and animal samples from Brazil using β-giardin gene: A phylogenetic analysis. Acta Tropica, 102 (1), 10–19. https://doi.org/10.1016/j.actatropica.2007.02.010

2. Feng, Y., & Xiao, L. (2011). Zoonotic Potential and Molecular epidemiology of Giardia species and giardiasis. Clinical Microbiology Reviews, 24 (1), 110–140. https://doi.org/10.1128/cmr.00033-10

3. Heyworth, M. F. (2016). Giardia duodenalis genetic assemblages and hosts. Parasite, 23, 13. https://doi.org/10.1051/parasite/2016013

4. Ballweber, L. R., Xiao, L., Bowman, D. D., Kahn, G., & Cama, V. A. (2010). Giardiasis in dogs and cats: update on epidemiology and public health significance. Trends in Parasitology, 26 (4), 180–189. https://doi.org/10.1016/j.pt.2010.02.005

5. Rishniw, M., Liotta, J., Bellosa, M., Bowman, D., & Simpson, K. W. (2010). Comparison of 4 Giardia diagnostic tests in diagnosis of naturally acquired canine chronic subclinical giardiasis. Journal of Veterinary Internal Medicine, 24 (2), 293–297. https://doi.org/10.1111/j.1939-1676.2010.0475.x

6. Thompson, R. C. A., Palmer, C. S., & O’Handley, R. (2008). The public health and clinical significance of Giardia and Cryptosporidium in domestic animals. The Veterinary Journal, 177 (1), 18–25. https://doi.org/10.1016/j.tvjl.2007.09.022

7. Zajac, A. M., Conboy, G. A., Little, E. E., & Reichard, M. V. (2021). Veterinary clinical parasitology (9th ed.). Wiley-Blackwell.

8. Bowman, D. D. (2014). Georgis' parasitology for veterinarians (10th ed.). Elsevier.

9. Paul, S., Chandra, D., Tewari, A. K., Banerjee, P. S., Ray, D. D., Boral, R., & Rao, J. R. (2009). Comparative evaluation and economic assessment of coprological diagnostic methods and PCR for detection of Cryptosporidium spp. in bovines. Veterinary Parasitology, 164 (2-4), 291–295. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2009.06.015

10. de Lucio, A., Bailo, B., Aguilera, M., Cardona, G. A., Fernández-Crespo, J. C., & Carmena, D. (2017). No molecular epidemiological evidence supporting household transmission of zoonotic Giardia duodenalis and Cryptosporidium spp. from pet dogs and cats in the province of Álava, Northern Spain. Acta Tropica, 170, 48–56. https://doi.org/10.1016/j.actatropica.2017.02.024

11. Gil, H., Cano, L., de Lucio, A., Bailo, B., de Mingo, M. H., Cardona, G. A., Fernández-Basterra, J. A., Aramburu-Aguirre, J., López-Molina, N., & Carmena, D. (2017). Detection and molecular diversity of Giardia duodenalis and Cryptosporidium spp. in sheltered dogs and cats in Northern Spain. Infection, Genetics and Evolution, 50, 62–69. https://doi.org/10.1016/j.meegid.2017.02.013

12. Drake, J., Sweet, S., Baxendale, K., Hegarty, E., Horr, S., Friis, H., Goddu, T., Ryan, W. G., & von Samson-Himmelstjerna, G. (2022). Detection of Giardia and helminths in Western Europe at local K9 (canine) sites (DOGWALKS Study). Parasites & Vectors, 15 (1), 311. https://doi.org/10.1186/s13071-022-05440-2

13. Mateo, M., Montoya, A., Bailo, B., Köster, P. C., Dashti, A., Hernández-Castro, C., Saugar, J. M., Matas, P., Xiao, L., & Carmena, D. (2023). Prevalence and public health relevance of enteric parasites in domestic dogs and cats in the region of Madrid (Spain) with an emphasis on Giardia duodenalis and Cryptosporidium sp. Veterinary Medicine and Science, 9 (6), 2542–2558. https://doi.org/10.1002/vms3.1270

14. Sanchez-Thevenet, P., Carmena, D., Adell-Aledón, M., Dacal, E., Arias, E., Saugar, J. M., Rodríguez, E., & Dea-Ayuela, M. A. (2019). High prevalence and diversity of zoonotic and other intestinal parasites in dogs from Eastern Spain. Vector-Borne and Zoonotic Diseases, 19 (12), 915–922. https://doi.org/10.1089/vbz.2019.2468

15. Dado, D., Montoya, A., Blanco, M. A., Miró, G., Saugar, J. M., Bailo, B., & Fuentes, I. (2012). Prevalence and genotypes of Giardia duodenalis from dogs in Spain: possible zoonotic transmission and public health importance. Parasitology Research, 111 (6), 2419–2422. https://doi.org/10.1007/s00436-012-3100-x

16. Zimmer, J. F., & Burrington, D. B. (1986). Comparison of four protocols for the treatment of canine giardiasis. Journal of the American Animal Hospital Association, 22, 168–172.

17. Kirkpatrick, C. E., & Farrell, J. P. (1984). Feline giardiasis: Observations on natural and induced infections. American Journal of Veterinary Research, 45 (10), 2182–2188. https://doi.org/10.2460/ajvr.1984.45.10.2182

18. Barr, S. C., & Bowman, D. D. (1994). Giardiasis in dogs and cats. The Compendium on Continuing Education for the Practicing Veterinarian, 16, 603–609.

19. Gabrielli, S., Milardi, G. L., Scarinci, L., Fanì, C., & Trotta, M. (2024). Comparative performance evaluation of four different methods for diagnosing Giardia infection in dogs and zoonotic assemblages’ identification. Veterinary Parasitology, 329, 110192. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2024.110192

20. Geurden, T., Berkvens, D., Casaert, S., Vercruysse, J., & Claerebout, E. (2008). A Bayesian evaluation of three diagnostic assays for the detection of Giardia duodenalis in symptomatic and asymptomatic dogs. Veterinary Parasitology, 157 (1-2), 14–20. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2008.07.002

21. Sultan, S. R., & Al-Mola, E. D. H. (2022). Laboratory techniques for diagnosing Giardia parasite in dogs in Mosul City, Iraq. International Journal of Health Sciences, 10467–10473. https://doi.org/10.53730/ijhs.v6ns3.9495

22. Anjali, A., Kakru, D. K., Bhatt, R., & Sharma, S. K. (2025). Comparative analysis of wet mount and concentration methods for detecting intestinal parasites in fecal specimens. South Asian Journal of Parasitology, 8 (3), 279–288. https://doi.org/10.9734/sajp/2025/v8i3234

23. Afroz, H., Alam, G. M. R., Hossain, M. M., Fakruddin, M., Rahman, M. H., Khan, Z. U. M., & Datta, S. (2013). Evaluation of iodine-glycerol for wet-mount preparation of feces for detection of intestinal parasites. International Journal of Biological & Medical Research, 4 (4), 3615–3618.

Downloads

Опубліковано

2026-06-25

Як цитувати

Противень, Р. А. (2026). Ефективність запропонованого способу підготовки та фарбування мазків фекалій під час лабораторної діагностики гіардіозу собак. Scientific Progress & Innovations, 29(1), 195–199. https://doi.org/10.31210/spi2026.29.01.31

Номер

Розділ

ВЕТЕРИНАРНА МЕДИЦИНА