Порівняльний аналіз профілів експресії генів gliP та cyp51A в ізолятах Aspergillus fumigatus від курей та зі зразків корму для птиці

Автор(и)

DOI:

https://doi.org/10.31210/spi2026.29.02.16

Ключові слова:

Aspergillus fumigatus, gliP, cyp51A, beta-actin, птиця, корм, qRT-PCR

Анотація

Aspergillus fumigatus є важливим опортуністичним патогенним грибом, який часто контамінує органічні субстрати на птахофабриках, зокрема корми, підстилку та пил, створюючи тим самим значний ризик виникнення респіраторної інфекції у птиці. Метою цього дослідження було порівняти відносні рівні експресії двох критичних генів-мішеней, gliP та cyp51A, в ізолятах Aspergillus fumigatus, пов’язаних із птицею та кормами, використовуючи ген beta-actin як внутрішній референтний контроль. Загалом було досліджено 15 штамів Aspergillus fumigatus, що включали 10 клінічних ізолятів, виділених від інфікованих курчат, та 5 контрольних штамів, отриманих із зразків пташиного корму. Виділення загальної РНК, подальший синтез комплементарної ДНК та кількісну зворотну транскрипційно-полімеразну ланцюгову реакцію (qRT-PCR) проводили за методом порівняльного циклічного порогу. Транскрипційну активність кожного зразка нормалізували щодо гена beta-actin, а кратність змін розраховували відносно калібрувальної контрольної групи штамів із корму на основі формули 2–ΔΔCT. Експериментальні дані продемонстрували стабільну та статистично значущу транскрипційну активацію обох генів-мішеней у групі ізолятів від птиці. Зокрема, рівні відносної експресії гена gliP, який бере безпосередню участь у нерибосомальному синтезі пептидів імуносупресивного мікотоксину гліотоксину, були значно підвищені в ізолятах від інфікованих курчат порівняно з контрольними штамами з корму, демонструючи середні значення кратності змін 5,03±0,29 проти 1,06±0,16 відповідно. Водночас експресія гена cyp51A, який кодує ланостерол-14-альфа-деметилазу та є основною молекулою-мішенню для азольних протигрибкових препаратів, також суттєво зросла в ізолятах від курчат порівняно з контролем, досягаючи середніх значень 4,30±0,39 проти 1,15±0,27 відповідно. Отримані результати свідчать, що інфекція Aspergillus fumigatus у птиці характеризується одночасною активацією метаболічних процесів, які відповідають як за продукування мікотоксинів, так і за адаптацію до азолів у довкіллі. Комбінований профіль експресії gliP та cyp51A може слугувати цільовою молекулярною панеллю для попереднього скринінгу й нагляду за рівнем патогенності та характеристиками протигрибкової резистентності ізолятів Aspergillus fumigatus у птахівництві перед проведенням більш високовартісних тестів на фенотипову чутливість або секвенування мутацій.

Посилання

1. Shaapan, R., & Girh, Z. (2024). Overview of aspergillosis in poultry - a review. Egyptian Journal of Veterinary Sciences, 55(2), 407–419. https://doi.org/10.21608/ejvs.2023.234624.1602

2. Earle, K., Valero, C., Conn, D. P., Vere, G., Cook, P. C., Bromley, M. J., Bowyer, P., & Gago, S. (2023). Pathogenicity and virulence of Aspergillus fumigatus. Virulence, 14(1), 2172264. https://doi.org/10.1080/21505594.2023.2172264

3. Gomez-Lopez, A., & Fernandez-Fernandez, C. (2024). Molecular characterization of gliotoxin synthesis in a biofilm model of Aspergillus fumigatus. Biofilm, 8, 100238. https://doi.org/10.1016/j.bioflm.2024.100238

4. van Dijk, M. A. M., Buil, J. B., Tehupeiory-Kooreman, M., Broekhuizen, M. J., Broens, E. M., Wagenaar, J. A., & Verweij, P. E. (2024). Azole resistance in veterinary clinical Aspergillus fumigatus isolates in the Netherlands. Mycopathologia, 189, 50. https://doi.org/10.1007/s11046-024-00850-5

5. Hokken, M., Coolen, J., Steenbreker, H., Zoll, J., Baltussen, T., Verweij, P., & Melchers, W. (2023). The transcriptome response to azole compounds in Aspergillus fumigatus shows differential gene expression across pathways essential for azole resistance and cell survival. Journal of Fungi, 9(8), 807. https://doi.org/10.3390/jof9080807

6. Odebode, A., Vanreppelen, G., Resendiz-Sharpe, A., & Van Dijck, P. (2024). First report of azole-resistant Aspergillus species in poultry feed in Kabale, South West, Uganda. Notulae Scientia Biologicae, 16(2), 11789. https://doi.org/10.55779/nsb16211789

7. Zalewski, D., & Bogucka-Kocka, A. (2025). RQdeltaCT: an open-source R package for relative quantification of gene expression using delta Ct methods. Scientific Reports, 15(1), 29762. https://doi.org/10.1038/s41598-025-11822-0

8. Bustin, S. A., Ruijter, J. M., van den Hoff, M. J. B., Kubista, M., Pfaffl, M. W., Shipley, G. L., Tran, N., Rödiger, S., Untergasser, A., Mueller, R., Nolan, T., Milavec, M., Burns, M. J., Huggett, J. F., Vandesompele, J., & Wittwer, C. T. (2025). MIQE 2.0: Revision of the minimum information for publication of quantitative real-time PCR experiments guidelines. Clinical Chemistry, 71(6), 634–651. https://doi.org/10.1093/clinchem/hvaf043

9. Livak, K. J., & Schmittgen, T. D. (2001). Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2-ΔΔCT method. Methods, 25(4), 402–408. https://doi.org/10.1006/meth.2001.1262

10. Bruns, S., Seidler, M., Albrecht, D., Salvenmoser, S., Remme, N., Hertweck, C., Brakhage, A. A., Kniemeyer, O., & Müller, F.-M. C. (2010). Functional genomic profiling of Aspergillus fumigatus biofilm reveals enhanced production of the mycotoxin gliotoxin. Proteomics, 10(17), 3097–3107. https://doi.org/10.1002/pmic.201000129

11. Gong, J., Huang, J., Liu, Y., Zhang, Y., & Gao, Y. (2024). Unveiling environmental transmission risks: Comparative analysis of azole resistance in Aspergillus fumigatus clinical and environmental isolates from Yunnan, China. Microbiology Spectrum, 12(12), e01594-24. https://doi.org/10.1128/spectrum.01594-24

12. Zubovskaia, A. (2025). Azole-resistant Aspergillus fumigatus: Epidemiology, diagnosis, and treatment considerations. Journal of Fungi, 11(10), 731. https://doi.org/10.3390/jof11100731

13. Ma, W., Kang, Y., Li, Q., Wang, P., & Jia, W. (2025). Transcriptomic and metabolomic analysis of a non-cyp51A mutant azole-resistant Aspergillus fumigatus isolated from Ningxia, China. Frontiers in Microbiology, 16, 1666905. https://doi.org/10.3389/fmicb.2025.1666905

14. Dieste-Pérez, L., Holstege, M. M. C., de Jong, J. E., & Heuvelink, A. E. (2025). Azole resistance in Aspergillus isolates from animals or their direct environment (2013–2023): A systematic review. Frontiers in Veterinary Science, 12, 1507997. https://doi.org/10.3389/fvets.2025.1507997

15. Paul, S., Stamnes, M. A., & Moye-Rowley, W. S. (2023). Interactions between the transcription factors FfmA and AtrR are required to properly regulate gene expression in the fungus Aspergillus fumigatus. G3: Genes, Genomes, Genetics, 13(10), Article jkad173. https://doi.org/10.1093/g3journal/jkad173

16. Frías-De-León, M. G., García-Salazar, E., & Acosta-Altamirano, G. (2023). Virulence attributes in Aspergillus fumigatus. In M. Razzaghi-Abyaneh, M. Rai, & M. Shams-Ghahfarokhi (Eds.), Aspergillus and aspergillosis: Advances in genomics, drug development, diagnosis and treatment. IntechOpen. https://doi.org/10.5772/intechopen.111778

17. Hussein, A. S., Mohammed, S. H., & Mohammed, B. L. (2025). Molecular and immunological detection of gliotoxin genes in Aspergillus fumigatus isolated from patients with invasive pulmonary aspergillosis. Eastern Ukrainian Medical Journal, 13(1), 189–197. https://doi.org/10.21272/eumj.2025;13(1):189-197

18. Zeng, M., Zhou, X., Yang, C., Liu, Y., Zhang, J., Xin, C., Qin, G., Liu, F., & Song, Z. (2023). Comparative analysis of the biological characteristics and mechanisms of azole resistance of clinical Aspergillus fumigatus strains. Frontiers in Microbiology, 14, 1253197. https://doi.org/10.3389/fmicb.2023.1253197

19. Schürch, S., Gindro, K., Schnee, S., Dubuis, P.-H., Codina, J. M., Wilhelm, M., Riat, A., Lamoth, F., & Sanglard, D. (2023). Occurrence of Aspergillus fumigatus azole resistance in soils from Switzerland. Medical Mycology, 61(11), myad110. https://doi.org/10.1093/mmy/myad110

20. Gomes, B., Dias, M., Cervantes, R., Pena, P., Carolino, E., Caetano, L. A., Viegas, S., & Viegas, C. (2025). Poultry farms as reservoirs of azole-resistant fungi: Occupational health risks in agricultural facilities. One Health, 21, 101230. https://doi.org/10.2139/ssrn.5369870

Downloads

Опубліковано

2026-09-12

Як цитувати

Асвад, Ш. А. М. (2026). Порівняльний аналіз профілів експресії генів gliP та cyp51A в ізолятах Aspergillus fumigatus від курей та зі зразків корму для птиці. Scientific Progress & Innovations, 29(2), 109–114. https://doi.org/10.31210/spi2026.29.02.16

Номер

Розділ

ВЕТЕРИНАРНА МЕДИЦИНА